2、溶液YP1在使用前先加入RNaseA，將試劑盒中提供的RNaseA 全部加入，混勻，置于2-8℃保存。

3、質粒得率與酵母菌株、質粒拷貝數、培養條件等因素有關。通常酵母質粒拷貝數都很低，酵母蛋白抽提試劑盒一般通過電泳或分光光度計法都很難檢測到，可通過PCR 或轉化大腸桿菌來檢測。 

4、使用前請先檢查溶液YP2和溶液YP3是否出現混濁，如有混濁現象，可在37℃水浴中加熱幾分鐘，待溶液恢復澄清后再使用。

5、得到的基因組DNA片段的大小與樣品保存時間、操作過程中的剪切力等因素有關。回收得到的DNA片段可用瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計檢測濃度與純度。如果洗脫時不使用洗脫緩沖液，而使用去離子水，比值會偏低，因為pH值和離子存在會影響光吸收值，但并不表示純度低。

6、洗脫緩沖液體積不應少于50ul ，體積過小影響回收效率；洗脫液的 pH值對洗脫效率也有影響，若需要用水做洗脫液應保證其pH 值在8.0左右，可用NaOH 將水的pH 值調至此范圍，pH 值低于7.0會降低洗脫效率；酵母蛋白抽提試劑盒在DNA產物應保存在-20℃，以防 DNA降解。這種方法針對雙向電泳，雜質少，離子濃度小的特點！當然單向電泳也同樣適用，只是電泳的條帶會減少。